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猪链球菌的分离与鉴定

2015-06-15 01:06
导读:医学论文毕业论文,猪链球菌的分离与鉴定样式参考,免费教你怎么写,格式要求,科教论文网提供大量范文样本:猪链球菌的分离与鉴定   发布时间: 2003-2-2  作者:朱凤
猪链球菌的分离与鉴定  
发布时间: 2003-2-2  作者:朱凤才 杨华富 胡晓杼 汪华 王广和 宋亚军 杨瑞馥  
2000年4月,陕西省岐山县种猪繁育场仔猪流行关节炎和败血症。无菌采取患关节炎猪的关节液和患败血症猪的肝、肺、脾及肠系膜淋巴结各8份病料,并对这16份病料进行病原菌分离试验、血清学鉴定、致病力试验、保护力试验、细菌回收试验、药敏试验。结果表明:该病原菌为2型猪链球菌,引起关节炎的猪链球菌较引起败血症的猪链球菌致病力弱;该菌对头孢菌素、青霉素高度敏感。

关键词:猪链球菌  分离与鉴定

论文完成日期:2000年6月15日

目   录

摘要………………………………………………1

前言………………………………………………2

1.                                 试验材料……………………………………….2

2.                                 方法…………………………………………….2

2.1病原分离……………………………………..2

2.2分离菌株的鉴定……………………………..2

2.3致病力及保护力试验………………………..3

2.4药敏试验……………………………………..3

3.结果…………………………………………….4

3.                                 1分离菌的培养特性及形态特征….………….4 (科教论文网 lw.NsEac.com编辑整理)

3.2生化试验结果………………………………..5

3.3血清学鉴定结果……………………………..5

3.4致病力试验及保护力试验结果……………..5

3.5细菌回收试验结果…………………………..5

3.6药敏试验结果………………………………..5

4分析与讨论…………………………………….6

参考文献…………………………………………7

猪链球菌的分离与鉴定

摘       要

2000年4月,陕西省岐山县种猪繁育场仔猪流行关节炎和败血症。无菌采取患关节炎猪的关节液和患败血症猪的肝、肺、脾及肠系膜淋巴结各8份病料,并对这16份病料进行病原菌分离试验、血清学鉴定、致病力试验、保护力试验、细菌回收试验、药敏试验。结果表明:该病原菌为2型猪链球菌,引起关节炎的猪链球菌较引起败血症的猪链球菌致病力弱;该菌对头孢菌素、青霉素高度敏感。

关键词:猪链球菌 分离鉴定

前        言

猪链球菌(Streptococcosis suis)是猪的一种重要疾病,养猪业发达国家如美、英、荷及爱尔兰等常有本病发生。我国于1958年就有猪链球菌病的报道,1976年我国南方几省曾一度广泛流行,给我国养猪业带来了很大危害。

猪链球菌截止到目前已发现的荚膜型已超过30种[1]。我国于1995年首例鉴定证实2型猪链球菌在我国的存在 [2]。猪链球菌可致2—6周龄仔猪败血症、脑膜炎、关节炎及支气管肺炎等[3-7]。病猪和带菌猪是本病的重要传染源,病猪的鼻液、尿液、血液、肌肉、内脏和关节内均可检出病原体。未经无害处理的病死猪肉、内脏及废弃物是散播本病的重要原因,呼吸道是本病的主要传播途径。本病一年四季均可发生,但以4—10月份发生较多。本病常为地方性流行性,多呈败血性。短期波及全群,如不进行防治,则发病率、病死率很高,慢性常为地方性散发性传染。 (科教论文网 lw.NsEac.com编辑整理)

2000年4月,岐山县种猪繁育场仔猪流行关节炎及败血症,多为2—6周龄仔猪。无菌采取关节炎病猪的关节液及败血症病猪的肝、脾、肺及肠系膜淋巴结,经实验室分离鉴定,证实为2型猪链球菌。现将分离鉴定结果报告如下。

1.  实验材料

1.  1病料    无菌采取岐山县种猪繁育场患关节炎病猪的关节液8份,编号为1—8号,无菌采取患败血症猪的肝、肺、脾及肠系膜淋巴结8份,编号为9—16号。

1.  2试剂    试验所用的各种糖均购自上海化学试剂二厂,批号自95—98年不等。

1.  3培养基    绵羊鲜血平板、匹克氏增菌液、10ml/L猪血清肉汤及各种糖培养基按常规方法制备[8]。

1.  4血清学试验     猪链球菌诊断血清与平板凝集抗原均购自中国兽药鉴察所,批号为990705。

1. 5药敏纸片    购自浙江省军区后勤部,批号20000312。

1.  6试验动物    健康小白鼠(30—35g)50只,购自第四军医大学实验动物中心。

2. 方法  

2.  1  病原分离

    将所采病料分别涂片,革兰氏染色镜检,然后,分别接种鲜血琼脂平板。37℃需氧培养24h后,挑取可疑菌落接种于匹克氏增菌液,37℃培养24h后,革兰氏染色,显微镜检查,再接种血清肉汤,纯化后放置4℃,冷藏备用。

2.2  分离菌株的鉴定

2.2.1生化试验

    随机抽取上述分离菌血清肉汤培养物3#、8#、13#、15#,分别接种于蔗糖、山梨醇、棉实糖、葡萄糖、甘露糖、蕈糖、乳糖、菊糖、水杨苷、马尿酸钠培养基,37℃培养24h后,观察其对糖的利用情况。 (科教论文网 lw.nseaC.Com编辑发布)

2.2.2血清学鉴定

    将3#、8#、13#、15#菌经缓冲肉汤培养8h,通过3000r/min离心10min,PBS洗涤2次,用Ph7.2 的0.01mol/L PBS制成    1*10 10~2*10 10细菌悬液。取1滴上述细菌悬液与适当的抗血清在洁净玻片上混匀,立即观察凝集现象。同时,设立细菌悬液对照及血清对照。

2.3 致病力及保护力试验

2.3.1菌落形成单位的测定  按常规方法进行[9]

2.3.2致病力试验

无菌吸取上述血清肉汤培养物 (含菌量5.0*10 8CFU/ml)以0.1ml /只、0.2ml/只、 0.3ml/只、 0.4ml /只、0.5ml/只分别腹腔注射小白鼠2只,观察其死亡时间和数量,测定其最小致死量。再将上述血清肉汤培养物腹腔注射小白鼠,小白鼠共14只,分7 组。第一组,每只小白鼠注射3#菌0.2ml,第二组每只注射8#菌0.2ml,第三组每只注射3#、8#菌各0.1ml,第四组每只注射13#菌0.2ml,第五组每只注射15#菌0.2ml,第六组每只注射13#、15#菌各0.1ml,第七组每只注射无菌血清肉汤1.0ml。以上各组分别饲养观察其死亡时间及数量。

2.3.3保护力试验

    将3#、8#、13#、15#血清肉汤培养物分别接种于18  cm鲜血平板。37℃培养24h后,收菌,用麦氏比浊管比浊,适当稀释,然后用0.3%甲醛灭活;37℃作用24h;作无菌检验。然后分别腹部皮下接种小白鼠2只,0.4ml/ 只。10天后,再分别人工感染,0.2ml/只。

2.3.4细菌回收试验

    对致病力试验出现症状及死亡小白鼠剖检,并采集病料,进行分离。

2.4药敏试验 

    采用纸片扩散法,用无菌棉签蘸取分离菌的血清肉汤培养物,均匀涂布于9cm鲜血平板;待稍干后,用无菌镊子将各种药敏纸片分别平贴在培养基表面,4℃2h使药物扩散,然后置37℃培养20—24h,观察结果。结果按抑菌圈直径大小和各抗菌药的具体标准,评定为高度敏感、中度敏感或耐药。结果评定参照表1。 (科教作文网 zw.nseac.com整理)

表 1    各种抗菌药物的抑菌圈与敏感标准

抗菌药物名称
 抑菌圈直径(mm)
 
耐药
 中度敏感
 高度敏感
 
青霉素

土霉素

洁霉素

链霉素

庆大霉素

卡那霉素

头孢菌素
 <10

<10

<10

<10

<12

<12

<10
 10~12

10~14

10~14

10~14

13~14

13~14

10~15
 >13

>15

>15

>15

>15

>15

>15
 

3.结果

3.1分离细菌的培养特性及形态特征

3.1.1培养特性

    37℃培养24h后,所采的12份病料在鲜血琼脂平板上形成表面光滑、隆起的灰绿色小菌落,外层有明显的β溶血环。该菌在匹克氏增菌液中底部有沉淀,在血清肉汤中先均匀浑浊,后在试管底部形成沉淀,上部澄清,不形成菌膜。

3.1.2染色特性  

    关节液、鲜血琼脂、匹克氏增菌液及血清肉汤培养物涂片、革兰氏染色、显微镜检查为革兰氏阳性,在关节液、鲜血琼脂培养物中多呈单个、双球或短链状排列,在匹克氏增菌液及血清肉汤培养物中多呈长链状。

3.2生化试验结果(见表2)

        表2    分离菌生化试验结果

鉴定  蔗糖 山梨 棉实 葡萄 甘露  蕈糖 乳糖 菊糖 水杨 马尿

项目        醇   糖   糖   糖                   苷  酸钠 (科教作文网http://zw.nseAc.com)
 
3#     +    -    -    +     +     +    +    +    +    -

8#     +    -    -    +     +     +    +    +    +    -

13#    +    -    -    +     +     +    +    +    +    -

15#    +    -    -    +     +     +    +    +    +    -
 

    判定标准:“+”表示大多数(90%—100%)菌株为阳性;“-”表示大多数(90%—100%)菌株为阴性。

    表2表明分离的3#、8#、13#、15#菌的生化反应结果均符合猪链球菌的生化特性,说明分离的菌均为猪链球菌。

3.3 血清学鉴定结果

将3#、8#、13#、15#细菌悬液与1/2及2型抗血清混合,立即可见明显的凝集现象,但不与1型及其他型抗血清出现凝集。直接挑取细菌菌落与血清混匀,也能得到一致结果。阴性对照均未见凝集现象。

3.4 致病力试验结果及保护力试验结果

3.4.1致病力试验结果

第一组、第二组小白鼠注射血清肉汤培养物48h内均未见死亡,第三组48h内有一只死亡,第四组、第五组、第六组在注射血清肉汤培养物18h内全部死亡。死亡后,小白鼠皮肤发绀,剖检肝、脾、肺、心出血,呈败血症。第七组健活。由于第一、二、三组死亡数量非常少,所以,再用相同剂量分别背部皮下接种小白鼠各2只,48h后处死,剖检发现注射部位有直径0.9~1.1cm的脓肿,浓汁呈黄绿色。

本文来自中国科教评价网



3.4.2保护力试验结果  免疫的小白鼠再经攻毒后均未发病。

3.5细菌回收试验结果

将上述死亡及发病的小白鼠剖检采集病料,进行细菌分离、生化试验及血清学鉴定,能得到原分离菌。

3.6药敏试验结果(见表3)

表3 药敏试验结果

菌号
 抑菌环直径(mm)
 
头孢菌素 青霉素 洁霉素 卡那霉素 土霉素 链霉素 庆大霉素
 
 3#      19      15    14      13      8     7      7

 8#      18      16    13      13      8     6      7

 13#     19      16    14      13      7     7      8

 15#     19      15    13      14      8     8      8

 平均值  18.75    15.5   13.5     13.25    7.75    7.0     7.5
 

    表3表明,结果敏感的药物依次是:头孢菌素、青霉素;中度敏感的依次是:洁霉素和卡那霉素;而对土霉素、链霉素、庆大霉素具有抗药性。

(科教作文网 zw.nseac.com整理)



4.分析与讨论

 4.1   猪链球菌(Streptoccus suts)是危害养猪业的一种重要病原菌。80年代初,加拿大由猪链球菌引起的疾病开始增加。那时仅检出9种夹膜血清型,其中2型是最常见的。

 4.2   猪链球菌病在临床上有败血型、脑膜脑炎型、关节炎型支气管炎型等。过去屡有败血型猪链球菌的报道,而关于集约化养猪场关节炎型链球菌病的报道较少。本次试验从患关节炎猪的关节液中成功的分离出了猪链球菌。另外,岐山种猪场,约有60%的仔猪流行关节炎,严重者可发生败血症而死亡,给种猪场造成巨大的经济损失。所以,研究本病可为生产中防制本病提供理论依据。

 4.3   病猪和带菌猪是本病的重要传染源。病猪的鼻液、尿液、肌肉、内脏和关节内均带有病原体,所以,我们建议,首先应加强对健康猪的免疫。另一方面,在发病后,加强病猪和健康猪的隔离,根据实验室所做的药敏试验结果,配合药物治疗,建议用头孢菌素、青霉素、洁霉素等药物治疗。岐山县种猪繁育场采纳我们的建议后,首先对所有的未发病仔猪用灭活疫苗免疫接种,对已发病的猪用青霉素等药物配合治疗。另外,注意卫生管理。目前该病已得到有效的控制。

 4.4   从致病力试验结果可以看出,引起猪关节炎的猪链球菌的致病力较小,而引起败血症的猪链球菌的致病力较强。但通过生化试验和血清学鉴定,它们又是同种细菌且血清型也相同。为什么同种血清型的猪链球菌的致病力差别很大?这个问题还有待于进一步研究。

参考文献


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[1] 杨本升,刘玉斌,苟仕金等. 动物微生物学. 吉林科学技术出版社,1995
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[2] 张庚华.猪链球菌感染最新研究进展.国外兽医学—畜禽疾病,1995,16(2):31

[3] 黄毓茂,黄引贤.2型猪链球菌的血清学鉴定.中国兽医学报,1995,15(1):63—65

[4] Gottschalk M.J Clin Microbiol,1989,27:2633—2636

[5] Higgins R et al.Can J vet Res,1990,54:170—173

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[7] Wiadsor.Vet Rec,1977,101:378—379

[8] 李健强. 兽医微生物学实验与实习指导.西北农业大学,1996

[9] 张彦明,贾靖国,刘安典.动物性食品卫生检验技术.西北大学出版社,1996

[10] 蔡宝祥.家畜传染病学.北京,中国农业出版社,1998

[11] 甘肃农业大学主编,兽医微生物学.北京,中国农业出版社,1982

[12] 刘荣标.兽医微生物学(上).台北,艺轩图书出版社,中华民中73 年

[13] 郑明球.家畜传染病学实验指导.北京, 中国农业出版社,1999

[14] 甘肃农业大学主编.兽医微生物学(第二版).中国农业出版社,1998

[15] 郝天斌,陈雨田.猪非溶血性关节炎型链球菌病的诊治.中国兽医科技.1999,29(3):34—35

[16] 陈书琨,林庆燕.猪链球菌生化突变株的分离与鉴定

[17] 汪诚天,叶祝年,一支方等.兽医实验手册.上海科学技术出版社,1984
 
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