试论参附注射液对阿霉素致心肌细胞钙超载的影

摘要：  【目的】观察参附注射液对阿霉素致心肌细胞钙超载的影响。【方法】选用SD大鼠随机分为正常对照组，正常生理盐水组，阿霉素组，阿霉素加生理盐水组，参附注射液低、中、高剂量组（剂量分别为0.3、0.6、1.2g·kg-1·d-1）；除２个正常组外，其他组均采用阿霉素腹腔注射复制模型，参附注射液组同时给药2周；造模3周后急性分离单个心肌细胞，采用离子图像法检测各组心肌细胞内游离Ca2+浓度，膜片钳技术记录各组细胞膜上L残透仆ǖ赖缌鞯谋浠。【结果】阿霉素组心肌细胞内游离Ca2+水平显著升高，细胞膜上L残透仆ǖ赖钠骄开放概率增加，平均电流幅度显著增大（P<0.05或P<0.01）；参附注射液高、中、低剂量均可显著降低心肌细胞内Ca2+水平，降低细胞膜上L-型钙通道的平均开放概率及平均电流幅度（均P<0.05），而各剂量组间作用wu显著性差异（P>0.05）。【结论】参附注射液拮抗阿霉素所致心肌细胞钙超载的作用可能与其减少外钙内流、降低内钙释放有关。

关键词：  参附注射液/药理学 阿霉素/毒性 钙超载 疾病模型 动物 大鼠

　　阿霉素(adriamycin，ADR)是临床上常用的蒽环类抗肿瘤药物，有抗瘤谱广、作用强的特点。然而，ADR具有严重的心脏毒性作用，出现剂量依赖性的心律失常，甚至心衰，和其他抗癌药物同时应用还可加重心肌的损害。因此心脏毒性成为ADR提高剂量或联合用药的主要障碍［1］。研究表明［2］，ADR心脏毒性作用机制主要集中在自由基的生成、细胞内钙超载、核酸的合成障碍和能量代谢障碍等方面。参附注射液是由人参(红参)、附片(黑附子)等中药提取物混合而成，主要有效成分为人参皂苷和乌头类生物碱，具有保护心肌超微结构、抗心律失常、增加冠脉血流量、抗脂质过氧化等作用［3］。参附注射液可减少ADR心肌毒性［4］，并通过抗自由基来保护阿霉素心肌损伤［5］。钙超载是阿霉素产生心肌毒性作用，导致心衰的1个重要因素［6］。本文从钙超载途径观察参附注射液对ADR心脏毒性的保护作用，现报道如下。 （转载自中国科教评价网www.nseac.com ）
　　1  材料与方法
　　1.1  动物  SD大鼠，SPF级，体质量180～200g，雌雄兼用，由广州中医药大学实验动物中心提供，许可证号：SCXK粤2003 0001。
　　1.2  主要仪器与试剂  CK40型光学倒置显微镜 (日本Olympus)；ST4040型染色机(德国)；EG1160型石蜡包埋机(德国)；心脏Langendorff灌流系统由埃德仪器（上海）国际贸易有限公司提供；AXT0SK0P2型正置显微镜(德国ZEISS)；LP5150型TillVision图像处理系统（德国）；EPC9型膜片钳放大器（德国）；MP285型微电极拉制仪（美国）；Pulse＆Pulsefit和TAC数据采集和信号分析处理系统（德国）；阿霉素(浙江海正药业有限公司，批号20050507)；参附注射液(雅安3九药业有限公司，批号20043116)；牛血清白蛋白（BSA，Roche分装)；Ⅰ型胶原酶(Worthington，X6C8594，美国)；4掺且一哌嗪乙磺酸（HEPPS）、乙2醇2乙醚2胺4乙酸（EGTA）均购自Sigma公司。其他均为国产分析纯。
　　1.3  溶液配制  wu钙台氏液：143mmol/LNaCl、5.4mmol/LKCl、0.3mmol/LNa2HPO4、5mmol/LHEPES、0.5mmol/LMgCl2、5mmol/LGlucose，用NaOH调至pH值为7.2～7.4。高钾溶液：70mmol/LL睪lutamicacid、25mmol/LKCl、20mmol/LTaurine、10mmol/LKH2PO4、3mmol/LMgCl2、10mmol/LGlucose、10mmol/LHEPES、0.5mmol/LEGTA，用KOH调至pH值为7.2～7.4。电极内液：110mmol/LBaCl2、10mmol/LHEPES，用BaOH2调pH值至7.2～7.4。电极外液：140mmol/L天门冬酸钾、10mmol/LEGTA、10mmol/LHEPES、5mmol/LGlucose、0.001mmol/L河豚毒素（TTX），用KOH调pH值至7.2～7.4。
　　1.4  分组及给药  SD大鼠随机分为正常对照组，正常生理盐水组，阿霉素组，阿霉素加生理盐水组，参附注射液低、中、高剂量组（简称参附低、中、高剂量组）。每组8只，雌雄各半。正常对照组：不做特殊处理。正常生理盐水组：腹腔注射生理盐水。阿霉素组：实验开始后第2、4天腹腔注射1mg/kg ADR，第6、8天腹腔注射2mg/kgADR，第10、12天腹腔注射3mg/kgADR，第14、16天腹腔注射4mg/kgADR，16d累计用药剂量达20mg/kg；然后取左心室心肌组织，苏木素-伊红（HE）染色，镜下观察心尖处心肌细胞、细胞间质等的排列情况，确定造模成功与否。阿霉素加生理盐水组：造模后1周，腹腔注射等容积的生理盐水，每日1次，共2周。参附组：造模后1周，按高、中、低剂量组分别腹腔注射参附注射液0.3、0.6、1.2g/kg，每日1次，共2周。 中国大学排名
　　1.5  单个心肌细胞急性分离  造模3周后大鼠断头放血后，迅速取出心脏，放置冰水混合wu钙台氏液去掉心脏的多余组织，保留1段主动脉，固定在Langendorff灌流装置上，用wu钙台式液灌流，5～10min后转换成以含胶原酶I(0.5g/L)和牛血清白蛋白(1g/L)的wu钙液灌流，灌流20～30min后将心室肌剪下，放入高钾溶液中吹打使细胞脱落，并于4℃保存于高钾溶液里，6h后进行实验。
　　1.6  钙浓度检测  将分离的大鼠心室肌细胞，以含钙1.0mmol/L的台氏液制备细胞悬液，贴壁于培养皿中，加入终浓度5μmol/L的荧光指示剂Fure2/AM负载，45min后以台氏液冲洗，然后在培养皿中加入有钙台氏液。将培养皿固定在荧光显微镜的载物台上，在TILLVISION中设置荧光激发方案，交替用波长340nm和380nm光波激发，曝光时间为40ms，每个循环之间时间间隔最短。用TILLVISION软件进行图像分析，记录340nm和380nm处荧光强度（F），除去自发荧光后计算出F340/F380比值，用此值代表细胞内游离钙离子浓度。细胞选取标准为杆状，细胞膜完整，横纹清楚，细胞内没有空泡及颗粒。
　　1.7  单通道电流记录与分析  电极阻抗约为4～6mΩ。钳制电压-40mV，由-50mV到+30mV给予去极化脉冲，阶跃为10mV，持续时间200ms，采样间隔5s，以使钙通道从失活状态中恢复。用Pulse﹠Pulsefit进行数据采集，用分析软件TAC进行测量。
　　1.8  统计方法  采用SPSS 10.0统计软件进行分析。
　　2  结果
　　2.1  参附注射液对心肌细胞内游离钙离子浓度的影响  阿霉素造模后，阿霉素组及阿霉素加生理盐水组心肌细胞内游离钙离子水平较正常对照组显著升高(P<0.01)；参附注射液可显著降低心肌细胞内游离钙水平(P<0.01)，但各剂量组间未见显著性差异(P＞0.05)，结果见表1。 内容来自www.nseac.com
　　表1  参附注射液对心肌细胞内游离钙离子浓度的影响（略）
　　Table 1  Effect of Shenfu Injection on the free calcium concentration of the myocardial cells
　　统计方法：单因素方差分析；①P<0.01，与正常对照组比较；②P<0.01，与阿霉素加生理盐水组比较
　　2.2  L残透仆ǖ赖募定  本实验采用110mmol/LBa2+作为载体离子流，Ca2+通道对Ba2+比对Ca2+有更大的通透性，且细胞外的Ba2+可以抑制K+通道，减少K+电流的干扰。钳制电压为-40mV，指令电压依次为-50mV至+30mV，阶跃为10mV，给予去极化刺激，为在不同指令电压下可记录到内向单通道电流。-40mV电压下，钠通道已失活，排除了内向钠电流的影响。通道呈单开放形式，闪烁样开放，活动较少，在去极化全过程中均开放，电流幅度在1.5pA至2pA左右。浴槽TTX可阻断Na+通道，故记录到的内向电流为L型Ca2+通道电流。2.3  参附注射液对心肌细胞膜上L残透仆ǖ赖挠跋  阿霉素组及阿霉素加生理盐水组细胞膜上L残透仆ǖ赖钠骄开放概率（P）增加，平均电流幅度（I）增大，与正常对照组比较差异有显著性意义（P＜0.05或P＜0.01）。参附注射液干预后，细胞膜上L残透仆ǖ赖钠骄开放概率、平均电流幅度均显著性降低（P＜0.05）。但未见明显剂量依赖性，结果见表2。
　　表2  参附注射液对心肌细胞膜上L残透仆ǖ赖挠跋欤略）
　　Table 2  Effect of Shenfu Injection on the L瞭ype calcium channel on myocardial membranes
　　统计方法：单因素方差分析；①P<0.05，②P<0.01，与正常对照组比较；③P<0.05，与阿霉素加生理盐水组比较
　　3  讨论
   
　　现在认为有两大主要因素介导了ADR的心脏毒性作用。1是自由基学说，它是目前研究最多的途径。对抗ADR心脏毒性的药物多是通过抗氧化这1途径起保护作用的，如维生素C、维生素E、谷胱甘肽、辅酶Q10［7］及1些中药制剂［2］。2是钙超载，Ca2+在维持心肌细胞兴奋-收缩偶联中起重要作用［8］，ADR引起的慢性心肌损伤与心肌细胞内钙超载密切相关［6］。研究发现［9］ADR使心肌中Ca2+浓度升高，与心肌形态学改变有良好相关性，且早于心肌形态学上的改变，提示Ca2+浓度升高参与了心肌的损伤，由于胞浆中游离Ca2+浓度异常增高导致细胞钙超载，继而引发了1系列细胞损害，影响了心肌细胞的收缩及舒张功能。本实验也证实了ADR可导致心肌细胞内钙离子浓度异常升高，与文献报导1致［10］。参附注射液干预后显著降低了异常心肌细胞内游离钙水平，提示参附注射液可减轻ADR所致的心肌细胞内的钙超载，起到保护心肌的作用。 （转载自中国科教评价网www.nseac.com ）
   
　　细胞内钙离子浓度的升高1方面来自外钙通过细胞膜上L残透仆ǖ澜入细胞膜内。另1方面来自细胞内肌浆网钙库释放的钙离子。此外，心肌细胞膜上的Na+/Ca2+交换活动，泵出Ca2+泵入Na+，有助于钙离子排出细胞［11］。前期研究发现［12］参附注射液可抑制咖啡因诱导的内钙释放。本实验观察到在ADR损伤的心肌细胞膜上，L残透仆ǖ赖钠骄开放概率显著增加，平均电流幅度升高，提示阿霉素引起的心肌细胞内钙离子超载，也可能是通过胞外钙离子的内流增加，或者在此基础上进1步诱发肌浆网内钙离子释放增多。参附注射液可减少受损心肌细胞膜上L残透仆ǖ榔骄开放概率，减少外钙的内流。综合前期实验结果，可以认为参附注射液可通过减少ADR损伤心肌细胞内的钙超载，避免因钙超载而继发的心肌损害，达到保护心肌的作用。其具体作用机制可能与减少外钙内流和降低内钙的释放有关，参附注射液是否可通过影响心肌细胞上的Na+/Ca2+交换体的活动，减少细胞内的钙超载，有待于进1步研究。
【参考文献】
  　　［１］邓万俊. 蒽环类抗肿瘤抗生素的心脏毒性［J］. 国外医学：抗生素分册，1998，19（2）：152.

　　［２］孙丽敏. 阿霉素致心肌损伤及中药对其治疗的研究进展［J］. 吉林医学，2005，26（11）：1233.

　　［３］刘绍辉，何明丰. 参附注射液对缺氧缺血再灌注损伤保护作用的研究进展［J］. 中国中医急症，2007，16（9）：1119.

　　［４］相雪梅，郭萍，闫金松. 参附注射液在白血病患者阿霉素化疗中的心肌保护作用［J］. 中国中西医结合杂志，2004，24（3）：237.

　　［5］罗霞，李东晓，陈东辉，等. 参附注射液对抗阿霉素毒性的研究［J］. 中药药理与临床，2000，16（5）：8.

　　［6］王睿，徐长庆. 阿霉素心脏毒性作用机制研究进展［J］. 齐齐哈尔医学院学报，2006，27（10）：1221.

　　［7］黄志煜，范云，刘鲁迎. 阿霉素心脏作用研究进展［J］. 中国误诊学杂志，2003，4（3）：521.

　　［8］张朝，翟溯澜. 心肌细胞L残透评胱油ǖ澜峁购图膊。跩］. 河南大学学报（医学版），2007，26（3）：1.

　　［9］Maeda A，Honda M，Kuramochi T，et al. Doxorubicin cardiotoxicity ：diastolic cardiac myocyte dysfunction as a result of impaired calcium handling in isolated cardiac myocytes［J］. Jpn Circ J，1998，62(7)：505.

　　［10］黄先玫，康曼丽，杜立中，等.阿霉素对实验兔心肌细胞内游离钙和肌浆网Ca2+睞TP酶活性的影响［J］.浙江大学学报（医学版），2002，31（1）：37.

　　［11］李和旺，韩启德. 细胞外钙内流入胞质的机制［J］. 生理科学进展，1996，27（4）：307.

　毕业网