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胰岛素样生长因子结合蛋白相关蛋白1在活化肝星

2014-08-27 01:07
导读:临床医学论文毕业论文,胰岛素样生长因子结合蛋白相关蛋白1在活化肝星怎么写,格式要求,写法技巧,科教论文网展示的这篇论文是很好的参考:毕业           作
毕业

          作者:刘立新 张骞骞 郭晓红 赵嘉慧 韩德5 

【摘要】  目的 研究胰岛素样生长因子结合蛋白相关蛋白1(insulin瞝ike growth factor binding protein瞨elated protein1,IGFBP瞨P1)在转化生长因子β1(tronstorming growth factor β1,TGFβ1)诱导的肝星状细胞中表达的变化及抗IGFBP瞨P1抗体对TGFβ1诱导的肝星状细胞产生Ⅰ型胶原的影响。方法 大鼠肝星状细胞株(HSC睺6)体外培养,分别设空白对照组(加入等量PBS)、不同浓度的TGFβ1处理组、不同浓度的抗IGFBP瞨P1抗体处理组,处理因素作用24 h,采用免疫组织化学染色、Western blot检测IGFBP瞨P1在HSC睺6中的表达,ELISA检测Ⅰ型胶原的含量并进行IGFBP瞨P1与Ⅰ型胶原的相关性分析。结果 TGFβ1各处理组IGFBP瞨P1的表达均较空白对照组显著增强。抗IGFBP瞨P1抗体可以拮抗TGFβ1诱导的HSC睺6产生的过多Ⅰ型胶原。IGFBP瞨P1与Ⅰ型胶原呈正相关(r=0.833,P<0.01)。结论 IGFBP瞨P1参与了肝纤维化的形成,且可能在肝纤维化的发生、发展中占有重要地位。

【关键词】  胰岛素样生长因子结合蛋白相关蛋白1; 肝星状细胞; 转化生长因子β1; Ⅰ型胶原

    【Abstract】  Objective  To study the expression of insulin瞝ike growth factor binding protein瞨elated protein1 (IGFBP瞨P1) in TGFβ1 induced hepatic stellate cell and the effects of anti睮GFBP瞨P1 antibody on the collagen Ⅰ production of TGFβ1 induced hepatic stellate cell. Methods   Rat hepatic stellate cell line (HSC睺6) was cultured in vitro, and then was incubated with phosphate buffered solution (blank control group), TGFβ1  at 2 μg/L or 4 μg/L  (TGFβ1 group), anti睮GFBP瞨P1 antibody at 0.1 μg/L, 1 μg/L or 2 μg/L (anti睮GFBP瞨P1 antibody group) or both (TGFβ1+anti睮GFBP瞨P1 antibody group). Twenty瞗our hours later, the expression of IGFBP瞨P1 in HSC睺6 was detected by immunohistochemical staining and western blotting; the content of collagen Ⅰ in culture supernatant of HSC睺6 was measured by ELISA; the relationship between IGFBP瞨P1 and collagen Ⅰ was analyzed. Results  The expression of IGFBP瞨P1 in TGFβ1 group was significantly higher than that in blank control group. The result of ELISA showed that anti睮GFBP瞨P1 antibody antagonized the over瞤roduction of collagen Ⅰ by TGFβ1 induced HSC睺6. There was a positive correlation between IGFBP瞨P1 and collagen Ⅰ (r=0.833, P<0.01). Conclusions  IGFBP瞨P1 may play an important role in the formation and development of liver fibrosis.

    【Key words】  IGFBP瞨P1;  Hepatic stellate cell;  TGFβ1;  Collagen Ⅰ

    近年来对肝硬化的治疗仍未有突破性的进展,因此, 推断肝硬化的发病机制中可能还有其他未知因素的参与[1]。胰岛素样生长因子结合蛋白相关蛋白1(insulin瞝ike growth factor binding protein瞨ela瞭ed protein1,IGFBP瞨P1)即IGFBP7(又名mac25)是1种具有生物活性的蛋白[2]。本实验旨在进1步明确IGFBP瞨P1在肝硬化、肝纤维化发生及发展中的作用,为临床寻找肝硬化、肝纤维化新的治疗靶点提供理论依据。

    1  材料与方法

    1.1  细胞与主要试剂

    大鼠肝星状细胞(hepatic stellate cell,HSC)株(HSC睺6)由美国Professor Friedman S.L.惠赠;转化生长因子β1(tronstorming growth factor β1,TGFβ1)为英国Peprotech公司产品;免疫组织化学染色及Western blot检测所用1抗IGFBP瞨P1山羊抗人多克隆抗体,Western blot检测所用驴抗山羊2抗,内参照β布《蛋白均为美国Santa Cruz公司产品;免疫组织化学染色所用抗山羊2抗为免疫组化试剂盒(SP法)提供,与2氨基联苯胺(DAB)显色试剂盒均购自福建迈新生物技术开发有限公司;牛血清白蛋白(BSA)为美国Roche公司产品;分子量标记(Protein Marker)为立陶宛MBI公司产品;PVDF膜为美国SABC公司产品;胞质舶核蛋白抽提试剂盒购自北京普利莱技术有限公司; Ⅰ 型胶原的ELISA定量检测试剂盒为北京博奥森生物技术有限公司产品。

    1.2  处理因素的分组及添加

    吸弃旧HSC睺6培养液后换含0.3%胎牛血清的培养液进行培养,同时加入处理因素进行实验分组。分为空白对照组(加入等量PBS)、TGFβ1 2、4、8、16 μg/L组,处理细胞24 h(预实验中曾处理过6、12、24、36及48 h,其中以24 h时IGFBP瞨P1表达变化最为显著)后收集细胞爬片;重复处理1次,提取细胞质蛋白,分别进行免疫组织化学染色及Western blot分析; 空白对照组、 TGFβ1 2、 4 μg/L组、抗IGFBP瞨P1抗体0.1、 1、 2 g/L组及TGFβ1 2 μg/L+抗IGFBP瞨P1抗体0.1 g/L、 TGFβ1 2 μg/L+抗IGFBP瞨P1抗体1 g/L、TGFβ1 2 μg/L+抗IGFBP瞨P1抗体2 g/L、TGFβ1 4 μg/L+抗IGFBP瞨P1抗体0.1 g/L、TGFβ1 4 μg/L+抗IGFBP瞨P1抗体1 g/L组,处理HSC睺6 24 h后收集细胞培养液上清进行ELISA检测。

    1.3  免疫组织化学染色检测HSC睺6中IGFBP瞨P1的表达

    细胞爬片用1%多聚甲醛固定5 min,内源性过氧化物酶阻断剂孵育以灭活内源性过氧化物酶,PBS洗涤后,以正常非免疫动物血清封闭,之后以IGFBP瞨P1抗体(1∶200)孵育过夜,经PBS洗涤,生物素标记的抗山羊IgG抗体孵育,经PBS洗涤,过氧化物酶标记的链霉素抗生物素孵育,经PBS洗涤,DAB显色。以PBS代替IGFBP瞨P1抗体(1抗)作空白对照染色。图像分析系统进行图像半定量分析,采用每张切片随机选取5个视野(×200),测定细胞中棕黄色和棕褐色阳性表达颗粒的累积光密度(interrated optical density,IOD)值。各组实验重复6次。1.4  Western blot分析IGFBP瞨P1表达

    将培养上清液去掉,PBS洗1遍,用0.25%胰蛋白酶消化HSC睺6,收集所有细胞后离心,向经离心后得到的100 μl细胞沉淀中加入500 μl细胞质裂解液裂解蛋白质。取30 μl总蛋白含量的裂解液进行15%102烷基硫酸钠簿郾烯酰胺(SDS睵AGE)凝胶电泳。经PVDF膜转移。5%牛血清白蛋白TBST液(TBS+0.1% Tween 20)封闭3 h,以IGFBP瞨P1抗体(1∶500)孵育过夜,洗涤,再以辣根过氧化物酶偶联的第2抗体作用3 h,洗涤后DAB显色。以同1张蛋白印迹膜洗涤后,再以β布《蛋白孵育杂交,作为内参照。计算机图像扫描分析,测定灰度值(A),经内参照β布《蛋白校正后得到蛋白的相对表达量。每个实验重复3批不同样本以上。

    1.5  ELISA法检测HSC睺6培养液上清中Ⅰ型胶原的含量

    收集细胞培养液上清为待测样本,检测步骤按试剂盒说明书进行。各组实验重复6次。

    1.6  统计学分析

    所有数据均以±s表示,采用SPSS 11.5统计软件进行ANOVA单因素方差分析,组间差异用SNK瞦检验,相关性采用Pearson相关分析。P<0.05为差异有统计学意义。

    2  结果

    2.1  IGFBP瞨P1在HSC睺6中的表达

    各组细胞均可见胞质内棕黄色或棕褐色颗粒沉积,IGFBP瞨P1呈阳性表达,但程度有所不同。空白对照组着色细胞数量少且颜色浅,而TGFβ1各处理组内大部分细胞胞质内呈棕黄甚或棕褐色着色,以TGFβ1 4 μg/L组阳性细胞数量最多且着色最深,见图1。Western blot分析见图2。

    IGFBP瞨P1 IOD值和A值在空白对照组呈低表达,实验各组较空白对照组增加,在TGFβ1 2、4 μg/L组中呈剂量依赖关系,但TGFβ1超过4 μg/L IGFBP瞨P1反而下降(表1)。

    2.2  HSC睺6中IGFBP瞨P1与Ⅰ 型胶原的相关性分析

    直线相关回归分析表明,IGFBP瞨P1与Ⅰ型胶原呈正相关(r=0.833,P<0.01)。Ⅰ型胶原的ELISA检查结果见表2。表1  IGFBP瞨P1的累积光密度值和灰度值表2  Ⅰ型胶原的ELISA检测结果

    3  讨论

    近年来的研究发现,尽管导致肝纤维化的发病机制不同, 但肝纤维化最终是以激活的HSC产生过

    多的细胞外基质沉积于肝脏形成肝纤维化为共同特征[3]。HSC是肝纤维化反应的重要效应器和细胞因子的主要来源及靶点[4]。TGFβ1是激活HSC并促进其表达细胞外基质的关键因子,TGFβ1与相应的特异性受体结合后,可激活HSC并促进HSC增殖和胶原的分泌。TGFβ1与肝纤维化程度关系最密切,是肝纤维化形成的主要细胞因子[5]。

    Boers等[6]的研究表明,在肝脏中,激活的HSC可能是IGFBP瞨P1的主要来源细胞;并且发现肝纤维化时激活的HSC向肌成纤维细胞转化过程中,IGFBP瞨P1的基因在转化中期呈高表达。从而推测IGFBP瞨P1可能是HSC活化的特异性标志,也许会成为肝纤维化发生的新的标志物。我们前期研究发现,肝纤维化患者肝组织IGFBP瞨P1的表达较空白对照组明显增强,且随着病变程度的加重,其表达逐渐增强。经图像分析结果显示组间比较差异有统计学意义。IGFBP瞨P1表达部位主要位于肝窦内和纤维间隔内的HSC、成纤维细胞及纤维间隔周围的肝细胞;且与肝组织TGFβ1、TGFRI、胶原纤维的表达呈正相关[7]。为了验证这1推测,我们进行HSC睺6体外培养,经不同剂量的TGFβ1处理后,采用免疫组织化学染色和Western blot分析后发现,IGFBP瞨P1在空白对照组呈低表达,而TGFβ1的各个剂量组HSC睺6表达IGFBP瞨P1的水平均较对照组显著增加,在1定范围内呈剂量依赖关系,其中以TGFβ1 4 μg/L组的作用最强。说明IGFBP瞨P1能够在TGFβ1诱导的HSC活化中过高表达。但TGFβ1过高浓度剂量(>4 μg/L)组IGFBP瞨P1的表达反而降低,推测可能是因为随着HSC睺6的不断活化,HSC自分泌TGFβ1逐渐增加,外源性TGFβ1刺激细胞表达IGFBP瞨P1的增幅下降,完全活化的HSC睺6内源性TGFβ1较高,对外源性TGFβ1反应性下降所致。这也说明了肝纤维化过程中HSC与TGFβ1存在着相互制约、相互促进的关系。

    HSC是细胞外基质的重要来源细胞[8]。TGFβ1刺激活化的HSC最明显的靶效应是诱导HSC大量合成Ⅰ型胶原等,阻断TGFβ1在HSC内的信号传导途径可抑制这种靶效应。我们选择以HSC睺6培养上清液中Ⅰ型胶原的检出量代表胶原的分泌量,观察到即使正常培养的HSC睺6(已有活化),Ⅰ型胶原分泌量的背景值已较高,但TGFβ1仍可促进HSC睺6分泌Ⅰ型胶原,比未用TGFβ1 处理的HSC睺6分泌Ⅰ型胶原明显增多。同时,我们对经TGFβ1作用后IGFBP瞨P1表达的增加与Ⅰ型胶原分泌量的增多进行了相关性分析,显示IGFBP瞨P1的高表达与Ⅰ型胶原分泌量的增多呈正相关。抗IGFBP瞨P1抗体对TGFβ1刺激的HSC睺6分泌Ⅰ型胶原有显著抑制作用, 其中以抗IGFBP瞨P1抗体1 g/L作用于TGFβ1 4 μg/L最为显著。这表明抗IGFBP瞨P1抗体可拮抗由TGFβ1诱导HSC过表达的Ⅰ型胶原,该抗体可以拮抗TGFβ1促肝纤维化的效应;也从另1方面说明IGFBP瞨P1在肝纤维化形成过程中可能起着非常重要的作用。

【参考文献】 (科教范文网http://fw.ΝsΕΑc.com编辑)
  [1] Wynn TA. Common and unique mechanisms regulate fibrosis in various fibroproliferative diseases. J Clin Invest,2007,117(3):524-529.

[2] Ruan W, Xu E, Xu F, et al. IGFBP7 plays a potential tumor suppressor role in colorectal carcinogenesis. Cancer Biol Ther,2007,6(3):354-359.

[3] Parsons CJ, Takashima M, Rippe RA. Molecular mechanisms of hepatic fibrogenesis. J Gastroenterol Hepatol,2007,22 Suppl 1:S79-84.

[4] Kisseleva T, Brenner DA. Hapetic stellate cells and the reversal of fibrosis. J Gastroenterol Hepatol,2006,21 Suppl 3:S84-87.

[5] Wolf E, Schneider MR, Zhou R, et al. Functional consequences of IGFBP excess瞝essons from transgenic mice. Pediatr Nephrol,2005,20(3):269-278.

[6] Boers W, Aarrass S, Linthorst C, et al. Transcriptional profiling reveals novel markers of liver fibrogenesis. J Biol Chem,2006,281(24):16289-16295.

[7] 田小霞,秦桂秀,贠克明,等.肝纤维化患者肝组织中胰岛素样生长因子结合蛋白的表达及意义.中华肝脏病杂志,2006,14(11):858-860.

[8] Schuppan D, Ruehl M, Somasundaram R, et al. Matrix as a modulator of hepatic fibrogenesis. Semin Liver Dis,2001,21(3):351-372.

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