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4。5。2 p38MAPK 和caspase-3
基因的表达变化p38MAPK 特异性抑制剂SB203580 处理后,与空白组和对照组比较,实验组p38MAPK基因的表达逐渐减少(P 均<0。05) (FIG。5 A, C),凋亡因子caspase-3 基因表达逐渐增多(P 均<0。05) (FIG。5 B, D),而对照组三组间及其和空白组间无统计学差异(P 均>0。05) 。
4。5。3 p38MAPK、p-p38MAPK 和caspase-3
蛋白的表达变化p38MAPK特异性抑制剂SB203580 处理后,p38MAPK相对表达强度虽然没有显着差异,但其磷酸化形式p-p38MAPK 相对表达强度明显下降(P 均<0。05),并随着SB203580 浓度增加逐渐减少(P 均<0。05),而凋亡因子caspase-3 蛋白表达明显增高(P 均<0。05),并随着SB203580 浓度增加逐渐增高(P 均<0。05) (FIG。5 E, F) 。对照组三组间及其和空白组间无差异性(P 均>0。05)。
4。6 卡铂和SB203580 作用后
p38MAPK 基因表达的变化分别取指数生长期卵巢癌细胞系RMG-I 和RMG-I-H 细胞,实验分六个组:单加卡铂组(其终浓度为60 μg/ml);加SB203580+卡铂组(加入SB203580 使其终浓度为10 mM,预孵育45 min,加入卡铂使其终浓度为60 μg/ml);两细胞系分别另设阴性对照组,继续培养72 h,收集细胞。利用RT-PCR 法检测RMG-I 细胞与RMG-I-H 细胞的p38MAPK 基因的表达(FIG。6),结果表明,两细胞系在卡铂作用下p38MAPK 相对表达强度明显高于相对的阴性对照组(P 均<0。05);且转染后RMG-I-H 细胞p38MAPK 相对表达强度明显高于未转染的RMG-I细胞(P<0。05);两细胞系SB203580+卡铂组p38MAPK 相对表达强度均明显低于相对的单用卡铂组(P 均<0。05)。两细胞系在卡铂作用下caspase-3 相对表达强度明显高于相对的阴性对照组(P 均<0。05);且转染后RMG-I-H 细胞p38MAPK 相对表达强度明显低于未转染的RMG-I细胞(P<0。05);两细胞系SB203580+卡铂组caspase-3 相对表达强度均明显高于相对的单用卡铂组(P 均<0。05)。
5 讨论
Lewis y 抗原是双岩藻糖基化的寡糖,属于A, B, O, Lewis 血型家族成员。 75%的上皮性卵巢癌出现Lewis y 不同程度的过量表达,且表达增加的患者预后不佳,我们利用基因转染的方法将人α1,2-FT 基因转入人卵巢癌细胞系RMG-I 建立Lewis y 抗原稳定高表达细胞系RMG-I-H[3],利用细胞免疫化学染色法检测RMG-I-H 和RMG-I 细胞膜上Lewis y 抗原的表达,结果显示RMG-I-H 的Lewis y 表达明显高于RMG-I[4],并利用该细胞系进一步证明了Lewis y 抗原的表达与卵巢癌的恶性生物学行为有关[4,6]。本实验通过RT-PCR 方法证明RMG-I细胞转染α1, 2-FT基因后FUT-1mRNA及Lewis y抗原水平显着增加的同时,caspase-3凋亡因子mRNA 和蛋白水平显着减少,另外,在前期的研究中我们用流式细胞仪也检测出转染后细胞RMG-I-H 的凋亡率减少,提示转染后Lewis y 抗原高表达的同时细胞凋亡减弱。
我们利用基因芯片的方法研究发现,α1, 2-FT 基因转染后的人卵巢癌细胞系RMG-I-H与转染前的细胞系RMG-I 相比,有88 种差异性表达基因,其中60 种基因表达增强,差异表达的基因参与了细胞增殖,信号转导,细胞黏附等多方面[8]。我们还发现,α1, 2-FT 基因转染后的RMG-I-H 细胞的部分耐药蛋白在基因及蛋白水平表达明显增高(如MDR-1、MRP-1、MRP-2、PKC-α、TopoⅠ),其变化与Lewis y 抗原表达密切相关[9],其中PKC-α 作为细胞传导通路中经典的蛋白激酶,可激活抗凋亡的信号传导通路进而参与多种肿瘤细胞的耐药。另外,H sieh 等[10]研究结果发现蛋白激酶C-α(protein kinase Calpha, PKC-α)低表达的细胞株细胞增殖能力、侵袭性均降低,且p38MAPK 磷酸化水平降低,经p38MAPK 抑制剂SB203580作用后的细胞株的增殖侵袭及转移能力也降低,提示p38MAPK 参与PKC-α 介导的肝癌细胞增殖和侵袭。因此我们推测,Lewis y抗原可能作为细胞表面信号传导系统的重要组成成分,参与细胞的耐药。